Photo-Fenton dapat didefinisikan sebagai reaksi kimia antara hydrogen peroksida dan katalis besi yang digunakan untuk oksidasi kontaminan atau air limbah yang jalannya reaksi dibantu oleh energi cahaya.
Inovasi teknologi ini dikenalkan salah satunya untuk menguraikan zat-zat organic (zat pencemar). Beberapa system dari metode ini salah satunya adalah UV-H2O2 dan UV-O3. Metode ini sering digunakan untuk mengatasi pencemaran lingkungan khusunya lingkungan perairan.
Pada reaksi ini keberadaan Fe2+ adalah sebagai katalis. FeCl3 atau FeSO4 merupakan jenis senyawa besi yang dipakai dalam reagen fenton. Hidrogen peroksida merupakan oksidator kuat tetapi pada konsentrasi rendah 0.1 % kinetika reaksinya terlalu lambat untuk mendegradasi kontaminan. Sehingga perlu penambahan Fe2+ untuk meningkatkan kekuatan oksidasi peroksida hingga dihasilkan radikal baru dan rantai reaksi dimulai. Reaksi oksidasi peroksida terkatalisis besi ini biasanya dijalankan pada pH 3-5 yang disebut sebagai “Fenton Chemistry” dan kombinasi reagen besi/perokisda disebut sebagai ”Fenton Reagent”.
B. Mekanisme Reaksi Fenton
Kombinasi antara hydrogen peroksida dengan Fe2+ merupakan reagen fenton yang memiliki kemampuan oksidasi tinggi. Reaksi oksidasi ini merupakan reaksi kompleks yang melibatkan dekompisisi H2O2 dengan bantuan Fe2+. Mekanisme reaksinya sebagai berikut (Neyens & Baeyens, 2003):
FeCl3+ H2O+hv Fe2+ + *OH + H++3Cl-
Fe2+ menginisiasi reaksi dan mengkatalisis reaksi dekomposisi H2O2 hingga dihasilkan radikal *OH. Radikal yang terbentuk bereaksi dengan cepat dalam lingkungan air.
Produk ion Fe2+ merupakan katalis pada dekomposisi hydrogen peroksida menjadi oksigen dan air. Pada rekasi ini juga terbentuk radikal *OH. Reaksi ini kemudian mendorong pembentukan ion Fe2+ kembali dari ion Fe3+.
Fe2+ + H2O2  Fe3+ + *OH + OH-
Reaksi antara H2O2 dengan Fe3+ didefinisikan sama dengan reaksi fenton (De Laat &Gallard, 1991). Modifikasi seringkali terletak pada penambahan Fe3+ daripada Fe2+ dan penambahan berlebih H2O2 dibandingkan dengan jumlah besi yang digunakan. Pada sitem Fe3+/H2O2, ion Fe2+ diproduksi kembali dan juga dihasilkan *HO (sebaik radikal lain dalam reaksi oksidasi dan reduksi senyawa organic). Reaktifitas oksidator dan reduktor dihasilkan pada rekasi inisiasi system Fe3+/ H2O2.
Reaksi H2O2 dapat disebut sebagai penyapu *OH dan sebagai inisiator terjadinya reaksi. *OH dapat mengoksidasi senyawa organic (RH) melalui pemutusan proton dan menghasilkan radikal alkil (*R) yang sangat reaktif dan dapat mengalami oksidasi lanjut.
Reaksi fenton secara umum disederhanakan oleh (Walling, 1971) menjadi persamaan reksi sebagai berikut:
FeCl3+ H2O2+hv Fe2+ + *O2H +H++3Cl-
Fe2+ + H2O2  Fe3+ + *OH + OH-
Persamaan rekasi ini menjelaskan bahwa dekomposisi H2O2 dapat terjadi jika ada ion H+. Ini berarti bahwa pada lingkungan pH rendah akan bermanfaat untuk pembentukan jumlah radikal *OH maksimum. Keberadaan senyawa organic, Fe2+, pH rendah dan radikal *OH dapat menyerang senyawa aromatic atau senyawa heterosiklik. Mereka juga dapat memutus atom hydrogen, kemudian memicu rantai reaksi oksidasi radikal.
Reaksi fenton pada perairan dipengaruhi oleh beberapa faktor yakni radikal*OH, Fe2+, radikal organic dan kondisi reaksi. Jika ada beberapa faktor yang ekstrim dapat menghasilkan dekomposisi H2O2 yang tidak efektif yang kemudian dapat mengurangi efisiensi oksidasi senyawa organic. Dekomposisi H2O2 akan berlangsung lebih cepat pada perbandingan Fe2+/H2O2 ≥2 (Barbusinki & Koscielniak, 1999). Penambahan jumlah H2O2 dan Fe2+ dari optimumnya akan menyebabkan penurunan efek pembersihan. Hal ini dikarenakan reaksi antara H2O2 dan Fe2+ dan produksi radikal *OH. Dalam hal ini H2O2 dan Fe2+ akan bertindak sebagai penyapu radikal, sehingga radikal *OH yang dihasilkan akan turun.
Kondisi optimum untuk reagen fenton telah diamati pada pH 3-5. Pada pH lebih rendah efektifitas penghilangan kontaminan akan menurun karena dekomposisi H2O2. Pada pH<3, konsentrasi ion H+ terlalu tinggi yang menyebabkan ion hydrogen sebagai aseptor utama radikal *OH (Barbusinki, 1999).
Dalam percobaan ini digunakan reaksi Fenton dimana pada reaksi ini memanfaatkan radikal hidroksi (*OH) yang dihasilkan oleh reaksi antara H2O2 dengan senyawa besi (contoh: FeCl3)
FeCl3+ H2O2  Fe3+ + *OH + OH-
Dalam kondisi gelap, reaksi ini akan berhenti dan pengoksidasian Fe2+ menjadi Fe3+ juga tidak sempurna. Tetapi dengan iluminasi, laju reaksi pada system ini dapat meningkat.
Alasan meningkatnya laju reaksi degradasi pada irradiasi meliputi fotoreduksi pada ion Fe3+ kembali menjadi ion Fe2+, yang menghasilkan radikal *OH.
Fe3+ + H2O  Fe2+ + *OH + OH+
Mekanisme reaksi lengkap untuk fotodegradasi menggunakan reagent Fenton sebagai berikut :
FeCl3+ H2O+hv Fe2+ + *OH + H++3Cl-
FeCl3+ H2O2+hv Fe2+ + *O2H +H++3Cl-
Fe2+ + H2O2  Fe3+ + *OH + OH-
*OH + H2O2  *O2H + H2O
Fe2+ +*OH  Fe3+ + OH-
Fe3+ + *O2H  Fe2+ + O2 + H+
*OH + *OH  H2O2
Rhodamine-B + *OH  *R + H+

*berbagai sumber

 HPLC secara mendasar merupakan perkembangan tingkat tinggi dari kromatografi kolom. Selain dari pelarut yang menetes melalui kolom dibawah grafitasi, didukung melalui tekanan tinggi sampai dengan 400 atm. Ini membuatnya lebih cepat.

HPLC memperbolehkan penggunaan partikel yang berukuran sangat kecil untuk material terpadatkan dalam kolom yang mana akan memberi luas permukaan yang lebih besar berinteraksi antara fase diam dan molekul-molekul yang melintasinya. Hal ini memungkinkan pemisahan yang lebih baik dari komponen-komponen dalam campuran.

Perkembangan yang lebih luas melalui kromatografi kolom mempertimbangkan metode pendeteksian yang dapat digunakan. Metode-metode ini sangat otomatis dan sangat peka.

Diagram alir HPLC

Pada umumnya windows program HPLC menampilkan urutan dari proses kerja HPLC, terlihat pada gambar (warna hijau) dimulai dari injeksi sampel-pompa(flow eluent)-kolom (terdapat dalam termostat)-detector-proses perhitungan hasil (kromatogram).

Gambar di atas sebagai contohnya.

 Mari bro kita pelajari tiap bagiannya…

 Injeksi sampel (port injection)

Bagian ini ada yang manual dan otomatis. Tapi disini saya tunjukkan port injection manual. Pada proses ini meliputi tekanan dan flow eluent. Dimana besarnya volume sampel yang diinjeksi hanya sekitar 10 µl, dengan alat penginjeksi yang disebut syringe.

 
Kolom dan pelarut

Membingungkan!!… (ya benar, itu kesan pertama kali saat kita mempelajari fase dalam kromatografi, untuk itu mari kita mempelajari secara bertahap).

Pada gambar diterangkan bahwa pada analisa kali ini menggunakan perlarut polar. Dimana tiap pelarut dapat diatur perbandingannya secara otomatis. Ex: perbandingan water : acetonitril = 40 : 60 dan setiap analisa, tiap senyawa menggunakan perbandingan yang berbeda. Flow dan preasure dikerjakan oleh pompa, dari mengambil pelarut dalam botol hingga menyalurkan pelarut ke dalam kolom.

Ada dua perbedaan dalam HPLC, yang mana tergantung pada polaritas relatif dari pelarut dan fase diam.

 Fase normal HPLC

Ini secara esensial sama dengan apa yang sudah kita baca tentang kromatografi lapis tipis (KLT) atau kromatografi kolom. Walaupun disebut normal, tapi ini bukan merupakan bentuk yang biasa dari HPLC. Dari bagian inilah suatu zat dapat terdeteksi.
Kolom diisi dengan partikel silika yang sangat kecil dan pelarut non polar misalnya heksan. Sebuah kolom sederhana memiliki diameter internal 4.6 mm (dan mungkin kurang/lebih dari nilai ini) dengan panjang 150 sampai 250 mm.

Senyawa-senyawa polar dalam campuran melalui kolom akan melekat lebih lama pada silika yang polar dibanding degan senyawa-senyawa non polar. Oleh karena itu, senyawa yang non polar kemudian akan lebih cepat melewati kolom.

Fase balik HPLC

Dalam kasus ini, ukuran kolom sama, tetapi silika dimodifikasi menjadi non polar melalui pelekatan rantai-rantai hidrokarbon panjang pada permukaannya secara sederhana baik berupa atom karbon 8 atau 18. Sebagai contoh, pelarut polar digunakan berupa campuran air, methanol dan acetonitril.

(ingat bukan air, methanol dan acetonitril biasa, tapi ini khusus untuk HPLC solvent).

Dalam kasus ini, akan terdapat atraksi yang kuat antara pelarut polar dan molekul polar dalam campuran yang melalui kolom. Atraksi yang terjadi tidak akan sekuat atraksi antara rantai-rantai hidrokarbon yang berlekatan pada silika (fase diam) dan molekul-molekul polar dalam larutan. Oleh karena itu, molekul-molekul polar dalam campuran akan menghabiskan waktunya untuk bergerak bersama dengan pelarut.

Senyawa-senyawa non polar dalam campuran akan cenderung membentuk atraksi dengan gugus hidrokarbon karena adanya dispersi gaya van der Waals. Senyawa-senyawa ini juga akan kurang larut dalam pelarut karena membutuhkan pemutusan ikatan hydrogen sebagaimana halnya senyawa-senyawa tersebut berada dalam molekul-molekul air atau metanol misalnya. Oleh karenanya, senyawa-senyawa ini akan menghabiskan waktu dalam larutan dan akan bergerak lambat dalam kolom. Ini berarti bahwa molekul-molekul polar akan bergerak lebih cepat melalui kolom. Fase balik HPLC adalah bentuk yang biasa digunakan dalam HPLC.

Ini adalah dasar HPLC like disolve like…tolong dipahami lebih dalam!

Termostat

Thermostat dikenal sebagai alat pengatur suhu kolom, di dalamnya terdapat kolom.

Waktu retensi

Mengapa pembahasan waktu retensi saya letakkan di bagian kolom? Karena dari kolom inilah senyawa terpisah pada waktu tertentu (waktu retensi).

Waktu retensi didefinisikan sebagai waktu yang dibutuhkan oleh senyawa untuk bergerak melalui kolom menuju detektor. Waktu retensi diukur berdasarkan waktu dimana sampel diinjeksikan sampai sampel menunjukkan ketinggian puncak yang maksimum dari senyawa itu.
Senyawa-senyawa yang berbeda memiliki waktu retensi yang berbeda. Untuk beberapa senyawa, waktu retensi akan sangat bervariasi dan bergantung pada:

• tekanan yang digunakan (karena itu akan berpengaruh pada laju alir dari pelarut)
• flow pelarut (berpengaruh pada banyaknya pelarut yang melewati kolom)
• kondisi dari fase diam (tidak hanya terbuat dari material apa, tetapi juga pada ukuran partikel)
• komposisi yang tepat dari pelarut
• temperatur pada kolom

Itu berarti bahwa kondisi harus dikontrol secara hati-hati, jika kita menggunakan waktu retensi sebagai sarana untuk mengidentifikasi senyawa-senyawa.

Detektor
Ada beberapa cara untuk mendeteksi substansi yang telah melewati kolom. Metode umum yang mudah dipakai untuk menjelaskan yaitu penggunaan serapan ultra-violet.

Banyak senyawa-senyawa organik menyerap sinar UV dari beberapa panjang gelombang. Jika kita menyinarkan sinar UV pada larutan yang keluar melalui kolom dan sebuah detektor pada sisi yang berlawanan, kita akan mendapatkan pembacaan langsung berapa besar sinar yang diserap.

Jumlah cahaya yang diserap akan bergantung pada jumlah senyawa tertentu yang melewati melalui berkas pada waktu itu. Kita akan heran mengapa pelarut yang digunakan tidak mengabsorbsi sinar UV. Pelarut menyerapnya! Tetapi berbeda, senyawa-senyawa akan menyerap dengan sangat kuat bagian-bagian yang berbeda dari specktrum UV.

Misalnya, metanol, menyerap pada panjang gelombang dibawah 205 nm dan air pada gelombang dibawah 190 nm. Jika kita menggunakan campuran metanol-air sebagai pelarut, kita sebaiknya menggunakan panjang gelombang yang lebih besar dari 205 nm untuk mencegah pembacaan yang salah dari pelarut.

Interpretasi output dari detektor

Output akan direkam sebagai rangkaian puncak-puncak, dimana masing-masing puncak mewakili satu senyawa dalam campuran yang melalui detektor dan menerap sinar UV. Sepanjang kita mengontrol kondisi kolom, kita dapat menggunakan waktu retensi untuk membantu mengidentifikasi senyawa yang diperoleh, tentunya, kita (atau orang lain) sudah mengukur senyawa-senyawa murninya dari berbagai senyawa pada kondisi yang sama.

Kita juga dapat menggunakan puncak sebagai jalan untuk mengukur kuantitas dari senyawa yang dihasilkan. Mari beranggapan bahwa tertarik dalam senyawa tertentu, X.

Jika kita menginjeksi suatu larutan yang mengandung senyawa murni X yang telah diketahui jumlahnya pada instrumen, kita tidak hanya dapat merekam waktu retensi dari senyawa tersebut, tetapi kita juga dapat menghubungkan jumlah dari senyawa X dengan puncak dari senyawa yang dihasilkan.

Area yang berada dibawah puncak sebanding dengan jumlah X yang melalui detektor, dan area ini dapat dihitung secara otomatis melalui layar komputer. Area dihitung sebagai bagian yang berwarna hijau dalam gambar (sangat sederhana).

Jika larutan X kurang pekat, area dibawah puncak akan berkurang meskipun waktu retensi akan sama. Misalnya,

Ini berarti dimungkinkan mengkalibrasi instrumen sehingga dapat digunakan untuk mengetahu berapa jumlah substansi yang dihasilkan meskipun dalam jumlah kecil.

Meskipun demikian, harus berhati-hati. Jika kita mempunyai dua substansi yang berbeda dalam sebuah campuran (X dan Y), dapatkah kita mengatakan jumlah relatifnya? Kita tidak dapat mengatakannya jika kita menggunakan serapan UV sebagai metode pendeteksinya.

Dalam gambar, area di bawah puncak Y lebih kecil dibanding dengan area dibawah puncak X. Ini mungkin disebabkan oleh karena Y lebih sedikit dari X, tetapi dapat sama karena Y mengabsorbsi sinar UV pada panjang gelombang lebih sedikit dibanding dengan X. Ini mungkin ada jumlah besar Y yang tampak, tetapi jika diserap lemah, ini akan hanya memberikan puncak yang kecil.

Rangkaian HPLC pada spektrometer massa 

Ini menunjukkan hal yang sangat menakjubkan! Pada saat detektor menunjukkan puncak, beberapa senyawa sementara melewati detektor dan pada waktu yang sama dapat dialihkan pada spektrometer massa. Pengalihan ini akan memberikan pola fragmentasi yang dapat dibandingkan pada data komputer dari senyawa yang polanya telah diketahui. Ini berarti bahwa identifikasi senyawa dalam jumlah besar dapat ditemukan tanpa harus mengetahui waktu retensinya.

Sumber :

Self & http://www.chem-is-try.org/

BIOLOGI TANAMAN JARAK PAGAR
Tanaman jarak pagar (Jatropha curcas L.) telah lama dikenal masyarakat Indonesia, yaitu semasa penjajahan oleh bangsa Jepang pada tahun 1942. Pada masa itu masyarakat diperintahkan untuk menanam jarak pagar di pekarangannya untuk dimanfaatkan sebagai bahan bakar kendaraan perang bangsa Jepang. Oleh karena itu tidak mustahil kalau tanaman jarak pagar memiliki beberapa nama daerah (lokal) antara lain jarak budeg, jarak gundul, jarak cina (Jawa); baklawah, nawaih (NAD); dulang (Batak); jarak kosta (Sunda); jarak kare (Timor); peleng kaliki (Bugis); kalekhe paghar (Madura); jarak pager (Bali); lulu mau, paku kase, jarak pageh (Nusa Tenggara); kuman nema (Alor); jarak kosta, jarak wolanda, bindalo, bintalo, tondo utomene (Sulawesi); dan ai huwa kamala, balacai, kadoto (Maluku).
Tanaman jarak pagar termasuk perdu dengan tinggi 1 – 7 m, bercabang tidak teratur. Batangnya berkayu, silindris dan bila terluka akan mengeluarkan getah. Klasifikasi tanaman jarak pagar yaitu:
Divisi : Spermatophyta
Subdivisi : Angiospermae
Kelas : Dicotyledonae
Ordo : Euphorbiaceae
Genus : Jatropha
Spesies : Jatropha curcas Linn

Morfologi / Ciri-ciri tanaman jarak pagar
Daun
Tanaman jarak pagar berdaun tunggal, berlekuk dan bersudut 3 atau 5. Daun tersebar disepanjang batang. Permukaan daun atas dan bawah berwarna hijau, permukaan bawah warnanya lebih pucat dibanding permukaan atasnya.
Daun lebar dan berbentuk jantung atau bulat telur melebar dengan panjang antara 5 – 15 cm. Helai daun bertoreh, berlekuk dan ujungnya meruncing. Tulang daun menjari dengan jumlah 5 – 7 tulang daun utama. Daunnya dihubungkan dengan tangkai daun, panjang tangkai daun 4 – 15 cm.

Bunga
Bunga tanaman jarak pagar adalah bunga majemuk berbentuk malai, berwarna kuning kehijauan, berkelamin tunggal dan berumah satu (putik dan benang sari dalam satu tanaman). Bunga betina 4 – 5 kali lebih banyak dari bunga jantan. Bunga betina dan bunga jantan tersusun dalam rangkaian berbentuk cawan yang tumbuh di ujang batang atau ketiak daun. Bunga memiliki 5 kelopak berbentuk bulat telur dengan panjang kurang lebih 4 mm. Benang sari mengumpul pada pangkal dan berwarna kuning. Tangkai putik pendek berwarna hijau dan kepala putik melengkung keluar berwarna kuning. Bunganya mempunyai 5 mahkota berwarna keunguan. Setiap tandan terdapat lebih dari 15 bunga. Tanaman jarak pagar termasuk tanaman monoecious dan bunganya uniseksual. Kadangkala muncul hermaprodit yang berbentuk cawan berwarna hijau kekuningan.

Buah
Buah jarak pagar berupa buah kotak berbentuk bulat telur dengan diameter 2 – 4 cm. Panjang buah 2 cm dengan ketebalan sekitar 1 cm. Buah berwarna hijau ketika muda serta abu-abu kecoklatan atau kehitaman ketika masak. Buah jarak terbagi menjadi 3-5 ruang, masing-masing berisi satu biji sehingga tiap buah terdapat 3-5 biji. Biji berbentuk bulat lonjong dan berwarna coklat kehitaman. Biji inilah yang banyak mengandung minyak dengan rendemen mencapai 30% – 50% dan mengandung toksin sehingga tidak dapat dimakan.

Syarat Tumbuh
Tanaman ini dapat tumbuh dengan baik pada dataran rendah sampai pada ketinggian 500 m dpl. Curah hujan yang sesuai untuk tanaman jarak pagar adalah 625 mm/th, namun masih dapat tumbuh pada kisaran curah hujan 300 mm – 2.380 mm/tahun. Sedang kisaran suhu yang diperlukan adalah antara 20ºC – 26ºC, pada suhu ekstrim (dibawah 15ºC atau diatas 35ºC) akan menghambat pertumbuhan serta mengurangi kadar minyak dalam biji dan mengubah komposisinya.
Tanaman jarak pagar mempunyai sistem perakaran yang mampu menahan air dan tanah sehingga tahan terhadap kekeringan serta berfungsi menahan erosi. Jarak pagar dapat tumbuh pada berbagai ragam tekstur dan jenis tanah dan mampu beradaptasi pada tanah yang kurang subur atau tanah bergaram, memiliki drainase yang baik, tidak tergenang dan pH tanah 5,0-6,5.

PENGENALAN OPT JARAK PAGAR
Pada masa lalu serangan Organisme Pengganggu Tumbuhan (OPT) tidak pernah diperhatikan, karena umumnya tanaman jarak pagar hanya ditanam sebagai tumpang sari dari tanaman lain. Tetapi dengan adanya pengembangan secara besar-besaran, kemungkinan tanaman akan ditanam dalam areal yang luas dan secara monokultur. Dengan demikian akan timbul masalah baru. OPT yang semula tidak menimbulkan masalah bisa menjadi masalah utama dan menimbulkan kerugian nyata.
Hama yang menyerang tanaman jarak pagar mulai dari perkecambahan sampai tanaman produktif antara lain : Spodoptera litura (ulat grayak), Scarabaeid (lundi, uret), Valanga spp. (belalang), Empoasca sp. (wereng daun), Tetranychus sp. (tungau), , Selenithrips rubrocinctus (Thrips) dan Ferrisia virgata (Kutu bertepung putih). Sedangkan hama yang menyerang hanya pada tanaman produktif yaitu Chrysocoris javanus (kepik penghisap cairan buah). Penyakit yang menyerang tanaman jarak pagar adalah : Bercak daun Cercospora, Layu Fusarium, dan Bercak daun bakteri. Gulma yang menyerang tanaman jarak pagar yaitu Suket grinting (Cynodon dactylon), Jaringan ketul (Bidens pilosa), Jebungan (Cyperus difformis), Bayam duri (Amaranthus spinosus), Babandotan (Ageratum conyzoides).

Hama yang menyerang pada pembibitan, pertanaman muda dan pertanaman produktif
Thrips (Famili Thripidae : Ordo Thysanoptera)
Pengenalan
Thrips (Selenithrips rubrocinctus Grd.) ditemukan hanya di daerah tropis dan suka sekali makan daun yang masih muda. Karateristik dari spesies ini adalah tiga segmen pertama dari abdomen nimfa berwarna merah. Di Indonesia banyak ditemukan pada tanaman mangga, salam dan jambu mete. Di India banyak menyerang tanaman kakao (Kalshoven, 1981).

Selenothrips rubricinctus
Gejala serangan
Karena serangga ini menghisap cairan daun yang masih muda, daun-daun jarak menjadi keriting dan berkerut. Lama-kelamaan daun menjadi kuning dan gugur.

Thrips pada tanaman jarak pagar
Tungau (Famili Eriophydae dan Famili Tarsonemidae : Ordo Acarina)
Tangau pada daun
Pengenalan
Ada dua kelompok besar tungau yang ditemukan pada tanaman jarak yaitu tungau bertungkai 2 pasang dari famili Eriophydae dan tungau bertungkai 4 pasang dari famili Tarsonemidae. Kerusakan yang ditimbulkan oleh kedua jenis tungau ini sangat merugikan.
Tungau Tarsonemidae, berwarna kuning hijau bening, tungau jantan lebih ramping dari tungau betinanya. Tungkai belakang panjang dan kuat berfungsi untuk mengangkat dan memindahkan tungau betina. Tungau ini menyebabkan tepi daun lebih bergelombang dibandingkan tungau Eriophydae. Tungau Eriophydae berbentuk kecil memanjang, berwarna kuning pada tungau dewasa dan bening pada tungau pradewasa. Hidup pada permukaan bawah daun dan pucuk yang masih muda, yang menyebabkan penebalan pada daun. Tungau adalah hama yang paling berbahaya pada masa vegetatif karena membawa virus dan serangannya kadang-kadang berat.
Gejala serangan
Gejala serangan daun menjadi berwarna kekuning-kuningan kemudian karat, kemudian daun mengeriput dan kemerah-merahan lalu gugur dan pada akhirnya tanaman akan mengalami hambatan dalam pertumbuhan. Daun yang terserang menjadi salah bentuk atau tidak normal (malformasi)

Gejala serangan tungau pada daun
Gejala serangan tungau pada pucuk tanaman jarak pagar
Kutu bertepung putih (Ferrisia virgata Cockerell)
(Famili Pseudococcidae : Ordo Homoptera)
Pengenalan
Kutu F. virgata ini mempunyai panjang hingga 4 mm, berbentuk oval, agak pipih, beberapa dengan benjolan – benjolan pendek di sepanjang sisi tubuh badannya. Metamorfosa sederhana yaitu telur – nimfa – dewasa. Kutu ini menghasilkan sekresi lilin berwarna putih dalam tepung yang berguna untuk perlindungan diri. Kutu bergerak cukup aktif. Penyebarannya sangat dibantu oleh angin, hujan dan hewan lain seperti semut. Nimfa dan kutu dewasa menghisap cairan pada bagian tanaman yang muda dan memproduksi embun madu yang disukai semut.

Kutu dapat berfungsi sebagai penyebar dan penularan virus tanaman. Kutu N. viridis bersifat polifag. Nimfa betina dapat dibedakan dengan melihat lapisan lilin di bagian dorsal berjumlah enam dan di bagian abdomen berjumlah lima. Badan kutu berwarna ungu kegelapan. Nimfa dan dewasa mengisap cairan pada bagian tanaman yang muda.
Gejala serangan
Jenis kutu menimbulkan kerusakan dengan gejala awal keriputnya bagian tanaman. Kemudian bagian tanaman yang terserang tersebut menjadi kering dan daunnya gugur. Kutu ini juga berfungsi sebagai vektor virus sehingga bagian tanaman juga dapat menjadi keriting karena terserang virus.

Wereng daun (Empoasca sp.)
(Famili : Cicadellidae dan Ordo : Homoptera)
Pengenalan
Merupakan salah satu hama utama di daerah tropis dan sub tropis. Di lapangan serangga ditemukan sepanjang tahun, tetapi sangat berbahaya bila menyerang lahan pembibitan. Betina meletakkan telur dalam jaringan daun, dekat dengan tulang daun di permukaan bawah.
Gejala Serangan
Nimfa dan imago mengisap cairan dari permukaan bawah sehingga daun berubah warna menjadi merah atau coklat, seringkali daun mengering dan mati atau daun menggulung/mengeriting di bagian ujung.

Imago Empoasca
Ulat grayak (Spodoptera litura)
(Famili : Noctuidae dan Ordo : Lepidoptera)
Pengenalan
Larva memiliki warna hitam terang dengan garis kuning pada abdomennya. Telur diletakkan berkelompok dalam berbagai ragam bentuk dan ukuran kurang lebih sebanyak 350 butir dan ditutup dengan bulu halus. Larva menetas setelah 3 – 5 hari dan hidup secara berkelompok dan merusak permukaan daun. Larva dewasa dalam waktu 2 minggu dapat mencapai panjang 50 mm. Pada siang hari larva bersembunyi di tempat teduh, sedang malam hari mereka menyerang tanaman muda. Pupa berada di dalam tanah. Kupu-kupu hidupnya pendek dan bertelur dalam 2 – 6 hari sebanyak 2.000 – 3.000 butir

Gejala Serangan
Penyebaran serangga ini termasuk sangat luas (kosmopolitan) terutama di negara Asia, Pasifik dan Australia. Serangga termasuk polifag pada berbagai jenis tanaman. Larva memakan daun tanaman, baik tanaman muda maupun tanaman dewasa dan meninggalkan bekas gigitan, pada serangan berat daun hanya tersisa tulang daunnya saja, bahkan terkadang tanaman menjadi gundul.
Belalang Daun (Famili Acrididae : Ordo Orthoptera)
Pengenalan
Belalang Valanga nigricornis berantena pendek, pronotum tidak memanjang ke belakang, tarsi beruas tiga buah, femur kaki belakang membesar, ovipositor pendek. Metamorfosa sederhana yaitu telur – nimfa – dewasa. Induk meletakkan telur di tanah. Setelah menetas, nimfa mulai merusak tanaman, biasanya menggigit daun dari tepi atau bagian tengah. Kerusakan berat dapat terjadi jika belalang menyerang tanaman yang masih muda.

Gejala serangan
Adanya bekas gerekan belalang pada daun atau bagian tanaman muda. Selain itu juga terdapat kotoran belalang di sekitar tanaman.

Uret (Famili Scarabaeidae : Ordo Coleoptera)
Pengenalan
Siklus hidup hama uret ini 9 – 11 bulan. Lama hidup imago 10 – 15 hari. Imago betina membuat lubang di dalam tanah saat akan bertelur. Telur diletakkan secara berkelompok, seekor betina dapat bertelur 15 – 60 butir selama hidupnya. Telur akan menetas setelah 6 – 14 hari. Larva yang baru keluar berwarna putih kebiruan. Larva instar ketiga berwarna kuning tua dengan bentuk tubuh seperti huruf C. Pada instar akhir larva hampir tidak berpindah tempat. Panjang instar akhir dapat mencapai 45–50 mm. Stadia Larva uret larva sekitar 172 – 224 hari. Stadia pupa terbentuk setelah melewati masa prapupa selama 2–3 hari. Panjang pupa 25–35 mm dan diketemukan pada kedalaman 20–30 cm atau lebih. Lama stadia pupa 21–24 hari.

Imago uret larva uret
Gejala serangan
Stadia larva sangat berbahaya karena memakan akar tumbuhan inang dan mematikan tumbuhan tersebut. Larva memakan akar tanaman sehingga tanaman tampak layu seperti kekurangan air, daun berwarna kuning, mengering dan akhirnya mati.

Hama yang hanya menyerang pada pertanaman produktif
Kepik Lembing (Chrysochoris javanus Westw)
(Famili Pentatomidae : Ordo Hemiptera)
Pengenalan
Kepik mempunyai panjang badan sekitar 20 mm. Antena beruas tiga, lebih panjang dari kepala, berbentuk perisai yang khas. Scutellum berkembang dengan baik. Tubuh berwarna jingga kemerahan dan terdapat garis-garis hitam yang jelas. Metamorfosa sederhana yaitu telur – nimfa – dewasa. Siklus hidup berkisar 60 – 80 hari. Nimfa dan kepik dewasa gerakakannya lambat. Kepik lembing menyerang pada saat pembungaan, menjelang pembentukan buah dan menghisap buah, sehingga menimbulkan kerusakan pada kapsul buah yang sedang berkembang.
Gejala serangan
Adanya bekas tusukan kepik pada bunga atau buah yang diserang. Bunga atau buah menjadi coklat kehitaman. Bunga tidak bisa menjadi buah, sedangkan pada buah menjadi rusak tidak bisa dipanen.

Kepik Lembing pada buah jarak pagar

Penyakit yang menyerang mulai dari pembibitan hingga pertanaman
Penyakit Bercak Daun Coklat
Penyebab penyakit Cercospora ricinella.
Gejala serangan
Gejala serangan pada daun ditandai dengan adanya titik hitam kecil atau titik coklat yang dikelilingi cincin berwarna hijau pucat berbentuk bulat atau agak bulat pada daun (berdiameter 1 – 3 mm). Sejumlah bercak muncul secara sporadis di permukaan daun. Ketika bercak membesar bagian tengah berwarna coklat pucat yang dikelilingi warna coklat tua. Bercak-bercak yang sudah tua berubah warna menjadi hijau keabu-abuan dengan kumpulan masa konidia di tengahnya. Beberapa bercak bergabung menjadi bercak yang tidak beraturan, pada serangan lanjut daun menjadi kering dan mudah jatuh.

Gejala serangan bercak daun coklat Pembesaran dari gambar sebelah kiri

Penyakit layu Fusarium.
Penyebab penyakit
Fusarium oxysporum.
Gejala serangan
Bagian tanaman yang diserang yaitu daun. Serangan dapat terjadi pada bibit dan tanaman di lapangan. Serangan pada bibit menyebabkan daun¬daun berwarna hijau pudar dan layu akhirnya mati. Serangan di lapangan menyebabkan daun-daun di bagian bawah rontok dan hanya menyisakan daun-daun di bagian atas saja.

Penyakit Bercak Daun Bakteri
Penyebab penyakit
Xanthomonas ricinicola.
Penyakit ini menyerang semua bagian tanaman pada semua stadia tanaman mulai dari pembibitan.

Gejala serangan
Gejala yang ditimbulkan adalah berupa bercak bulat dan tidak beraturan berwarna coklat gelap. Bakteri tumbuh dengan baik pada temperatur 31ºC. Gejala pada daun yaitu tampak bercak berwarna coklat kehitaman dan agak basah. Apabila daun yang terserang tidak segera dipetik, bercak akan menjalar ke batang dan dapat mematikan tanaman.
Gulma
Beberapa jenis gulma yang ditemui di pertanaman jarak pagar.
Suket grinting (Cynodon dactylon) Pembesaran dari gambar sebelah kiri
Jaringan ketul (Bidens pilosa) Pembesaran dari gambar sebelah kiri
Jebungan (Cyperus difformis) Pembesaran dari gambar sebelah kiri
Bayam eri (Amaranthus spinosus) Pembesaran dari gambar sebelah kiri

PENGAMATAN OPT JARAK PAGAR
Pengamatan adalah kegiatan pengumpulan informasi tentang keadaan populasi atau tingkat serangan OPT dan faktor yang mempengaruhi, pada waktu dan tempat tertentu.
Pengamatan dilaksanakan oleh petani/petugas di lokasi yang dipilih untuk mewakili areal tertentu, dengan menggunakan metode tertentu agar menghasilkan data yang representatif.
Pengamatan dilakukan secara berkala, sekali seminggu atau sekali sebulan sesuai dengan fase rentan tanaman / saat mulai munculnya OPT sebaran.
Pengamatan dapat menjadi dasar pengambilan keputusan perlu tidaknya dilakukan tindakan pengendalian OPT. Keputusan pengendalian dilakukan petani / kelompok tani untuk lahannya masing-masing. Petugas perlindungan menjadi fasilitator dan pendamping petani dalam pengambilan keputusan. Pengamatan juga bermanfaat dalam menilai keberhasilan tindakan pengendalian yang dilaksanakan.
Aspek-aspek dalam kegiatan pengamatan :
Sasaran pengamatan
Sasaran pengamatan pada pohon contoh tanaman jarak pagar dibedakan menurut organ tanaman, yaitu
a) Akar
b) daun dan pucuk
c) buah
Jenis OPT yang diamati pada bagian akar adalah jenis Scarabaeid (lundi, uret). Jenis OPT yang diamati pada bagian daun dan pucuk yaitu Spodoptera litura (ulat grayak), Valanga spp. (belalang), Empoasca sp. (wereng daun), Tetranychus sp. (tungau), Selenithrips rubrocinctus (Thrips) dan Ferrisia virgata (Kutu bertepung putih). Jenis OPT yang diamati pada bagian buah adalah Chrysochoris javanus (kepik lembing).
Pengambilan contoh
Untuk setiap kebun dipilih diambil 10 tanaman contoh untuk mewakili kondisi kebun tersebut. Pemilihan tanaman contoh dapat dilakukan mengikuti diagonal atau baris tanaman. Tanaman contoh dapat berupa tanaman yang sama untuk setiap pengamatan (contoh tetap) atau selalu berganti setiap pengamatan (contoh tidak tetap). Tanaman contoh tetap biasanya digunakan untuk mengamati fluktuasi perkembangan OPT tertentu sedangkan tanaman contoh tidak tetap digunakan untuk mengetahui kehadiran OPT yang menyerang pertanaman. Untuk petani dengan luas kepemilikan kebun yang terbatas sebaiknya pengamatan dilaksanakan pada seluruh tanamannya.
Hasil pengamatan
Hasil pengamatan adalah populasi OPT sasaran atau tingkat serangannya. Hasil pengamatan dicatat pada tabel seperti terdapat pada Lampiran 1. Untuk kemanfaatan hasil pengamatan, sebaiknya pengamatan difokuskan pada OPT utama di pertanaman jarak pagar setempat, misalnya Chrysochoris javanus (kepik lembing) dan penyakit Layu Fusarium. Pemilihan OPT yang akan diamati sepenuhnya tergantung pada kelompok tani jarak pagar setempat.
PENGENDALIAN OPT JARAK PAGAR
Prioritas pengendalian OPT tanaman jarak pagar diutamakan pada tindakan pencegahan yang dimulai dari pemilihan klon unggul dan tahan terhadap OPT sasaran, menjaga kesehatan tanaman dengan mengatur kelembaban kebun, sanitasi, pemupukan yang bijaksana. Jika tindakan tersebut tidak berhasil menekan atau mempertahankan peningkatan infestasi OPT sasaran, dapat dilaksanakan tindakan berikut.
Uret
(Famili Scarabaeidae : Ordo Coleoptera)
Pengendalian secara kimiawi menggunakan insektisida berbahan aktif cypermethrin, profenofos dan karbofuran. Pengendalian secara mekanis dengan mengumpulkan uret dan memusnahkannya. Pengendalian hayati dapat dilakukan dengan aplikasi cendawan Beauveria bassiana.
Thrips
(Famili Thripidae : Ordo Thysanoptera)
Pengendalian secara kimiawi berbahan aktif fipronyl atau profenofos dengan dosis 1 ml/liter atau ekstrak mimba dengan dosis 4 ml/liter. Sanitasi di areal pertanaman dengan mengumpulkan daun terserang kemudian dibakar.
Tungau
(Famili Eriophydae dan famili Tarsonemidae : Ordo Acarina)
Pengendalian secara kimiawi menggunakan akarisida berbahan aktif propargit dan amitras. Sanitasi di areal pertanaman dengan cara mengumpulkan daun terserang kemudian dibakar.
Kutu bertepung putih (Ferrisia virgata Cockerell)
(Famili Pseudococcidae : Ordo Homoptera)
Pengendalian secara kimiawi menggunakan insektisida berbahan aktif MIPC. Penggunaan insektisida masih kurang efektif karena telur, nimfa dan kutu dewasa ditutupi lapisan lilin sehingga cairan insektisida sulit menembus. Musuh alami kedua kutu ini antara lain : predator Curinus coerulus dan Coccinella repanda. Sanitasi kebun dilakukan dengan membuang dan membakar bagian tanaman yang terserang.
Wereng daun (Empoasca sp.)
(Famili : Cicadellidae dan Ordo : Homoptera)
Varietas tanaman jarak pagar yang memiliki kandungan karoten rendah lebih toleran atau memiliki lapisan lilin pada bunganya kurang disukai wereng. Jadi penanaman varietas ini bisa mencegah serangan disamping aplikasi insektisida yang mengandung imidaklorit, betasiflutrin dan karbosulfan pada pembibitan atau penggunaan insektisida sistemik yang direkomendasikan.
Ulat grayak (Spodoptera litura)
(Famili : Noctuidae dan Ordo : Lepidoptera)
Untuk mengatasi ulat grayak ini agak sulit karena seringkali serangan terjadi secara mendadak dan tidak diduga sebelumnya. Namun pengendalian dengan memadukan berbagai cara pengendalian, antara lain pengendalian secara mekanis dengan mengumpulkan kelompok telur dan larva instar awal, kemudian dimusnahkan; musuh alami yang ada di lapangan, misalnya parasit telur Telenomus spodopterae, parasit larva Microplitis manilae, predator dari Carabidae, pathogen NPV dan Borrelinavirus ; Insektisida nabati dari serbuk biji nimba (SBM); bila populasi tinggi dapat digunakan bio-pestisida yang berbahan aktif Bacillus thuringiensis atau virus Spodoptera litura-NPV; atau insektisida sistemik yang direkomendasikan.
Belalang Daun
(Famili Acrididae : Ordo Orthoptera)
Pengendalian secara kimiawi menggunakan insektisida berbahan aktif MIPC dan BPMC. Pengendalian secara hayati menggunakan cendawan Metarhizium sp. atau Beauveria bassiana. Pengendalian secara mekanis dengan mengumpulkan telur, nimfa dan imago kemudian dimusnahkan. Pengendalian secara kultur teknis dengan tidak menanam tanaman inang lain seperti jagung dan kacang-kacangan.
Kepik Lembing (Chrysochoris javanus Westw)
(Famili Pentatomidae : Ordo Hemiptera)
Pengendalian secara kimiawi menggunakan insektisida berbahan aktif imidachlorpid dan MIPC. Pengendalian dengan pestisida nabati dapat menggunakan ekstrak mimba. Pengendalian secara mekanis dilakukan dengan mengumpulkan telur, nimfa dan imago kemudian dimusnahkan. Pengendalian secara kultur teknis dengan tidak menanam tanaman inang lain seperti padi, jagung, kacang-kacangan, jenis solanaceae di sekitar areal pertanaman.
Penyakit Bercak Daun Coklat.
Menggunakan varietas tahan dan toleran. Pengendalian penyakit dapat menggunakan fungisida berbahan aktif karbendazim atau mankozeb. Sering melakukan sanitasi kebun dengan membuang dan memusnahkan bagian tanaman terserang penyakit.
Penyakit layu Fusarium.
Untuk pencegahan pilih benih dan bibit yang sehat. Perlakuan benih dengan merendam biji dalam larutan fungisida berbahan aktif karbendazim. Penggunaan varietas tahan atau toleran, perbaikan saluran drainase untuk mencegah penggenangan air di sekitar tanaman dan membakar sampah atau bagian tanaman yang terinfeksi juga dapat menekan perkembangan penyakit layu fusarium. Untuk pengendalian di lapangan pengendalian dapat menggunakan fungisida berbahan aktif karbendazim. Sanitasi kebun dilakukan dengan cara membersihkan gulma, membuang dan membakar bagian tanaman yang sakit.
Penyakit Bercak Daun Bakteri
Dikendalikan dengan sanitasi, perlakuan biji yang akan digunakan sebagai bibit dan insektisida.
Gulma
Bibit jarak pagar peka terhadap persaingan dengan gulma selama awal pertumbuhannya. Oleh karena itu pengendalian gulma baik secara mekanis atau dengan herbisida dianjurkan selama fase awal penanaman. Gulma yang berada dalam polybag perlu dibersihkan / dicabut dengan interval 2 minggu sekali agar tidak mengganggu perakaran dan pertumbuhan bibit. Seperti halnya di pembibitan, tanaman jarak pagar yang masih muda sangat peka terhadap pengaruh gulma di sekitar perakarannya. Untuk itu penyiangan gulma perlu dilakukan pada 20 hari setelah tanam, selanjutnya dilakukan sekali dalam 3-4 bulan.

From: www.pdf-search-engine.com/jarakpagar-pdf.html

Water contain
Prinsiple
Evaporation at 105°C, lose heavy counted as water pregnancy in example.
Tool
a) Analatic balance
b) evaporation cup
c) oven
d) Eksikator

Prosedur
weigh careful 5 g example that refined into evaporation cup that known wt, dry in temperature 105°c in dryer cupboard during 2 clocks. make cool in eksikator, weighed. this job is done repeatedly with interval time 1 clock until permanent heavy.
calculation
Lose heavy
water contain, % w/w = ———————— x 100
weight sample

ANALYSIS N DEGREE

Procedure
Principle
nitrogen in urea menghidrolisis with h2so4 and nh3 formed mendestilasi from alkali solution. destilat accommodated in solution h2so4 and sour surplus menitrasi returns. ends points titration reached when is colour purple from red methyl blue metilen mixture indicator, turn into purple greenness
Tool
a) pumpkin kjeldahl;
b) erlenmeyer;
c) unit destilasi complete;
d) buret;
e) pipette;
f) measure glass;
g) funnel;
h) heater.

Reagent
a) h2so4 thick (sg 1,84);
b) solution 0,25 n h2so4;
c) solution 0,25 n naoh;
d) solution naoh 40 %;
e) blue methyl red mixture indicator metilen;
f) phenolphtalein indicator .

Procedure
a) weigh 5 g example and insert into pumpkin kjeldahl;
b) add 25 ml h2so4 thick with glass ukur and DIDIHKAN with little flame during 1 clock;
c) after cold, thin with AQUADEST and move into measure pumpkin 500 ml then contents until line sign and shake up to homogen;
d) pipette 25 ml solution into pumpkin destilasi and add aquadest up to its contents is 300 ml;
e) prepare tool destilasi and this solution is mendestilasi. destilat be accommodated into 50 ml 0,25 n h2so4 in erlenmeyer 500 ml that contain several drops mixture indicator red methyl blue metilen, end refrigerators must gotten immersed in solution penampung;
f) before solution mendestilasi, add naoh 40% into pumpkin destilasi until solution is red colour (indicator phenolphthalein). increasing naoh must be done swiftly, stop destilasi after erlenmeyer full around 400 ml destilat;
h) Liter surplus 0,25 n h2so4 with 0,25 n naoh up to ends points titration reached and register volume 0,25 n naoh that used; .
i) do titration blangko as in on.
v1 = vol. naoh 0,25 that used in titration.

Calculation

with:
v1 volume naoh 0,25 n that worn in titration blangko, declared in ml;
v2 volume naoh 0,25 n that worn in example titration, declared in ml;
n normalitas naoh that worn as titran;
w heavy example, declared in in gram;
14,008 atomic weight (ba) nitrogen;
f thinning factor

Analysis P2o5 Degree

Example Preparation

P2o5 Dissolve In Cittrate Acid 2 % (P2o5 Available)
weigh careful 1 g example that refined (to escape us mesh 80) into measure pumpkin 500 ml.
add 1 ml etanol then add nitrate acid 2 % up to line sign, shake during 1 hour, then filter in dry place.

Principle
degree p2o5 determined according to gravimetri (quimociac). this methode is based in precipitation (c6h7n3) h3po4.12m0o3
before done balance sediment must be released from citrate, hcl, hclo4, h2so4, hno3 and nh4oh

Reagent
1. hno3 thick
2. hcl thick
3. pereaksi quimociac:
a. dissolve 70 g natrium molybdate dihidrat into 150 ml aquadest
b. dissolve 60 g cittrate acid in 150 ml water and add 85 ml hno3 thick.
c. add solution a into solution b while then stirred (magnet stirring rod) until homogen
d. insert 5 ml quinoline into solution hno3 35 % (35 ml hno3 thick in 100 ml flute water).
e. insert solution d into solution c while stirred then (magnet stirring rod) until completely same, hush last night and filter with paper whatman no. 41 or equal.
f. furthermore filtrat added 250 ml acetone and thin with flute water until 1 litre.
5.5.1.4 device
a) gooch cup with glass wool filter or asbestos.
b) dryer cupboard
c) heater
d) desikator
e) analytic balance

Procedure
a) pipette 25 ml example 5.5.1 into cup glass. add 7-8 ml hno3 thick and heat slow until boil and let during not less 3 minutes. close cup glass with watch glass. fix above asbestos gauze, add 50 ml aquadest and 50 ml reagent quimociac and stir then during 1/2 minute. heat slowly until boil. let to boil during 1 minute.
b) take away from on heater, make cool and during refrigeration process is stirred 3 or 4 times and hush sediment steams.
c) filter to pass gooch cup that overlayed asbestos and known wt. wash sediment – wash with aquadest until free ingredients that disturb and let dry.
d) dry cup alongs with sediment in dryer cupboard in temperature 200°c during 1 hour or in temperature 250°c during 1/2 clock, make cool in desikator and weigh.

Calculation
w1 x f x 3,2073
degree pospor as p2o5, % = ———————— x 100
w2
w1 = heavy sediment, g
f = thinning factor
w2 = heavy example, g

POTASSIUM DEGREE TEST
manner as k2o in fertilizer npk solid according to gravimetri
Principle
potassium is precipated as potassium klorat and appointed according to gravimetri

Reagent
a) periklorat acid, hclo4 p. a.
b) etanol 96%
c) barium chloride solution, bacl2 10%
d) fenol ftalein indicator
e) aquadest

Device
a) analytic balance
b) cup glass 400 ml
c) glass stirring rod
d) gooch indicator
e) pottery container pumpkin 500 ml
f) volume pipette 10 ml
g) electricity heater
h) funnel
i) measure glass 10 ml
j) filters paper
k) porcelain cup
1) electricity dryer
m) eksikator

Procedure
a) weigh careful 5 g example, dissolve with aquadest in pottery container pumpkin 500 ml and shake.
b) fix with aquadest until line sign.
c) pipette 10 ml solution, insert into cup glass 400 ml and add 15 ml bacl2 solution 10%.
d) boiled until formed sediment then make cool.
e) add indicator fenol ftalein and cao p. a. until react alkali then heat.
f) filter and tampung filter result in porcelain cup.
g) add 8 ml hc104 p. a. , heat until almost dry and appear white smoke.
h) make cool and add 5 ml hc1o4 1 % in alcohol 96%.
i) stir while refined with stirring rod and filter with gooch cup full 3 sheets of paper that known heavy permanence in 120°c.
j) dry sediment and gooch cup in 120°c.
k) make cool and weigh
l) repeat working until permanent heavy.

Calculation
potassium as k2o (%) = { [(w2-w1) x p x 0.3399 x 100/ w } x [100 / (100-ka

explanation:
w heavy example, g
w, heavy gooch cup empty, g
w2 heavy gooch cup + sediment after dehydrated, g
p thinning;
0,3399 chemistry factor k2o
ka water contain, %

Reference Sni 02.2803.2000
From…all resource

The Sampling Area
Soil test results can be no better than the sample collected. Thus, each soil sample submitted to the laboratory should be representative of the area for which fertilizer recommendations are to be made. A composite sample should be collected, consisting of small portions of soil taken from approximately 20 locations. For field crops, soil portions should be taken from an area not to exceed 10 acres (Figure 1). For lawns and gardens, soil portions should be collected at random from eight to 10 locations. Areas of contrasting soils, problem spots or portions of fields where crop response is significantly different should be sampled separately, provided the area can be fertilized separately.

Sampling Tools and Depths to Sample
Several types of tools can be used for collecting soil samples. One is the soil tube or probe. A uniform portion of soil is collected rapidly and accurately by pushing the tube into the ground to the desired depth and removing a soil core (Figure 2).
The most common tool used is a shovel or spade. With this tool, a uniform portion of soil is collected by first making a V-shaped cut into the soil to the depth of sampling. Next, a 1-inch thick vertical slice of soil to the same depth is removed from the smoothest side of the cut (Figure 2). From this, a 1-inch strip of soil the length of the slice is removed, as indicated in Figure 3. If other tools are used for sampling (garden trowel, auger, etc.), make sure that a uniform amount of soil is collected to the desired depth from a sufficient number of sites within the sampling area.
Remove organic debris, rocks and trash from the soil surface before collecting the sample. For determination of pH, P, K, micronutrients and organic matter, take soil samples to a depth of 6 inches.

For NO-TILL row crops, collect the sample to a depth of 6 inches for pH and nutrient determinations and to a depth of 2 inches for organic matter determinations. For determination of soluble salts, sample within the rooting zone of the affected crop or the expected rooting zone if sample is taken prior to crop establishment. For the corn pre-sidedress nitrate-nitrogen test, collect samples to a depth of 12 inches. Soil portions for each composite sample should be placed into a clean container and thoroughly mixed. From this, remove enough soil to fill a sample box (Figure 4). When sampling for nitrate-nitrogen, the sample should be thoroughly dried within 36 hours to obtain the best results.

When to Sample
Although soils can be tested any time during the year, fall is a very desirable time. Fields are usually drier and more accessible and the laboratory is less rushed than in the spring. Also, testing in the fall allows recommended rates of lime, phosphate and potash to be applied well in advance of spring planting. By sampling at approximately the same time each year, it is easier to compare soil test results with previous results from the same field. Soils should be dry enough to till when sampling. If wet samples are collected, they should be air-dried before being packaged and mailed. Wet samples are difficult to handle, more subject to being lost during mailing and greatly delay laboratory testing. Wet samples cannot be analyzed for nitrate-nitrogen.

How Often to Test Soils
The following general guidelines may be used to determine how often soils should be tested. However, the frequency can vary depending upon cropping intensities, soil types, fertilization rates, tillage methods, weather conditions and new research findings.
1. Continuous Row Crops (conventional) – every two to three years.
2. Double-Cropping Systems – every two years.
3. Continuous No-Till Soybeans (only) – every three to five years.
4. Continuous No-Till Corn or Cotton – every two years.
5. Hay Systems – every two years.
6. High-Value Cash Crops (Tobacco, Vegetables) – annually.
7. Lawns, Gardens and Pasture Crops – every three to five years.
8. Any time a nutrient problem is suspected.
9. At the beginning of a different cropping rotation.

Lgsung ke lahan..busyyyeeeetttt,,,,SubhanAllohkeren bnget, sejuk banget, indah banget,,,,tapi y capek..(namanya jg kerja)ntr deh tak kasih fotonya.hari k-2 q smpet mikir…krjaan q kok berat gni y..q smpet ada konflik batin…pngen kluar dari ni perusahaan…tpi….pd hari ke-3,,q mlah berfikir lg..ini kan rejeki..ko malah gak q syukuri c…(dalam batin c..)waktu itu juga q kdatangan tamu dari HoLLand (orng belanda mksudnya)..dia orang kaya2 aj gak gentar hadapi medan kya gini..q ank udik aj berlagak sok gak kuat…q mkir..ap karena faktor ni ya orang indonesia gak bisa maju????? bisa jawab?

SubhanAlloh.....knpa kadang Qt tdak sadar akan Ciptaan ALLOH????

mo dapat kaya??? baca rangkaian kata ni dulu

hindari keterpurukan finansial kita

koyo yo ya’ ya’ o, ning ora ono apa-apa ne

kokeh-an gaya, ning kesithik-en daya

daya juang rendah, greget sedang

kata-kata perenunganmu….

cinta aka uang adalah akar dari segala kejahatan

kekurangan uang adalah akar dari segala kejahatan

saya memperoleh pengalaman belajar dari membaca tentang kekuatan dan pengaruh pikiran pada dua orang yang berbeda (si miskin dan si kaya)

si miskin: “saya tidak mampu membelinya!”

si kaya: “bagaimana saya bisa membelinya?”

~~ yang satu melepaskan anda dari kesulitan dan yang satu lagi memaksa anda untuk berfikir

si miskin: “alasan saya tidak kaya adalah karena saya mempunyai kamu, nak.”

si kaya: “alasan saya harus kaya karena saya mempunyai kamu, nak.”

si miskin: “bila sampai pada urusan uang, bermainlah dengan aman, jangan mengambil resiko.”

si kaya: “belajarlah mengelola resiko pada uang.”

si miskin: “rumah kita adalah investasi terbesar kita dan juga asset kita yang terbesar.”

si kaya: “rumah saya adalah liabilitas (kewajiban) dan jika rumahmu adalah investasimun yang terbesar, kamu akan mendapatkan masalah.”

“Orang miskin dan kelas menengah bekerja untuk uang”

“Orang kaya mempunyai uang yang bekerja untuk mereka”

“atau jika kamu macam orang yang tidak mempunyai keberanian, kamu hanya menyerah setiap kali hidup mempermainkan kamu. Jika kamu orang semacam itu, sepanjang hidup kamu hanya akan mencari aman, melakukan hal-hal yang tanpa resiko, menyelamatkan diri untuk suatu peristiwa yang tidak akan pernah terjadi. Tetapi yang sebenarnya adalah, kamu membiarkan kehidupan membuatmu tunduk, menyerah. Jauh dilubuk hati kamu ngeri untuk mengambil resiko. Kamu sungguh ingin menang, tetapi rasa takut akan kekalahan lebih besar daripada suka cita kemenangan. Jauh di dalam hati, kamu dan hanya kamu akan tahu bahwa kamu tidak berusaha untuk itu. Kamu memilih untuk bermain dengan aman.”

“Mereka merasa takut bila tidak mempunyai uang. Bukannya menghadapi ketakutan itu, mereka malah bereaksi dan bukan berfikir. Mereka bertindak secara emosional dan tidak menggunakan kepala mereka. Kemudian mereka mendapatkan sedikit hasil, dan emosi kegembiraan, hasrat, ketamakan mengambil alih, dan lagi-lagi mereka bereaks, buka berfikir.”

Menghindari perangkap terbesar dalam hidup

“Perangkap itu disebabkan oleh dua emosi, ketakutan dan keinginan. Gunakan keduanya untuk kepentingan kalian, bukan untuk melawan kalian.”

“Kebanyakan orang menjalani kehidupan mereka dengan mengejar upah, membayar kenaikan dan keterjaminan kerja karena emosi keinginan dan ketakutan, dan tidak sungguh-sungguh mempertanyakan kemana pikiran yang digerakkan emosi itu menuntun mereka. Itu mirip gambar seekor keledai yang menarik sebuah gerobak, dengan si pemilik yang menjuntaikan sebuah wortel persis didepan mulut si keledai. Si pemilik keledai bebas kemana saja dia suka, tetapi keledai hanay mengejar sebuah ilusi (wortel).”

Taukah perbedaan antara aset dan liabilitas????

Aset = sesuatu yang dapat menambah pemasukan

Liabilitas = sesuatu yang dapat menambah pengeluaran

Renungan seusai lulusmu

Setelah meninggalkan bangku sekolah, kebanyakan dari kita tahu bahwa yang banyak diperhitungkan bukanlah soal gelar perguruan tinggi, IPK atau ranking yang baik. Dalam dunia nyata diluar dunia akademis, sesuatu yang lebih dari sekedar gelar jelas dituntut. Saya mendengarnya dengan sebutan “KEBERANIAN, BERNYALI, PINTAR, TERAMPIL, SERDIK , GIGIH, ULET dan LIHAI”. Factor-faktor ini apapun labelnya, akhirnya lebih banyak memutuskan masa depan seseorang dari pada gelar akademis yang disandang.

Saya lebih enyambut perbahan ketimbang takut pada perubahan.

Contoh soal pemikiran, seberapa kreatif anda memecahkan masalah financial

Intelegensi financial sebenarnya hanya berarti mempunyai pilihan lebih banyak. Jika peluang tidak terjadi pada anda lakukan perbaikan untuk memperbaiki posisi financial anda?jika sebuah peluang jatuh kepangkuan anda, dan anda tidak mempunyai uang, dan bank tidak mau meminjamkan uang pada anda, apalagi yang dapat anda lakukan agar peluang itu berjalan sesuai dengan keinginan anda? Jika firasat anda salah, dan apa yng telah anda perhitungkan tidak terjadi, bagaimana anda dapat mengubah jeruk menjadi uang jutaan? Itulah intelegensi financial. Bukan banyaknya peluang yang tejadi, melainkan berapa banayk solusi financial yang dapat anda pikirkan untuk mengubahnya menjadi sesuatu yang kita inginkan.

<ROBERT KIYOSAKI>

bahagia menurut q..blum tentu sama bahagia mnurut kamu,,sO….aQ ingin termotivasi oleH perubahan…dari pada q takut dengan perubahan?!….

aq KAYA ga’ ingin orng bilang  “”koyo-koyo yo ning ra ono opo-opo”",,,q adlh aq, yang suatu saat nanti pasti  q akn tmukan jatidiri q, tuk semuanya q persembahkan….tuk semuanya q bagi kebahagiaan..

moga ALLAH slalu berikan terbaik dan terbesar bwt qT…..amieN

2008. Efektivitas Penggunaan Tanah Diatomea Yang Diaktivasi Dengan Larutan Asam Sulfat (H₂SO₄) Untuk Memperbaiki Mutu Minyak Goreng Bekas.

Kata Kunci: tanah diatomea, pemucatan, minyak goreng bekas, asam sulfat

Minyak goreng yang telah digunakan untuk menggoreng akan mengalami kerusakan, karena adanya proses hidrolisis, polimerisasi dan oksidasi yang menghasilkan senyawa-senyawa alkohol, asam-asam lemak bebas, peroksida, aldehid dan keton. Adanya senyawa ini menyebabkan rupa bahan yang kurang menarik dan cita rasa yang tidak enak, serta kerusakan sebagian vitamin dan asam lemak esensial yang terdapat dalam minyak. Kerusakan minyak ini apabila dikonsumsi akan dapat menyebabkan diare, pengendapan lemak dalam pembuluh darah, kanker dan menurunnya nilai cerna lemak. Oleh karena itu penelitian ini bertujuan untuk mengetahui seberapa besar efektivitas tanah diatomea yang diaktifkan dengan larutan asam sulfat (H₂SO₄) dapat digunakan untuk memperbaiki mutu minyak goreng bekas.

Penelitian ini menggunakan minyak goreng bekas sebagai sampel. Minyak goreng bekas dipucatkan dengan tanah diatomea yang telah diaktivasi secara fisika yaitu dengan pamanasan pada suhu 250^oC dan kimia yaitu pengaktifan dengan larutan asam sulfat (H₂SO₄). Penelitian dilakukan dengan variasi konsentrasi H₂SO₄ 1; 1,5; 2; 2,5; 3; 5 dan 7M sebagai aktivator tanah diatomea dan variasi perlakuan suhu 70^oC dan 150^oC sebelum pemucatan minyak goreng bekas. Parameter yang ditentukan adalah warna, kadar air, bilangan asam, bilangan peroksida, bilangan iod.